抗生素在預防、治療微生物引起的疾病時具有良好的療效，同時還能促進畜禽生長，所以被廣泛用于畜禽養(yǎng)殖場[1-2].然而大多數抗生素并不能被動物腸道完全吸收，大部分仍以母體或者相關代謝產物的形式排出體外[2-3].這些排出體外的抗生素會對環(huán)境中的微生物產生一個選擇壓力，誘導和選擇環(huán)境微生物產生耐藥性，增加環(huán)境中抗性基因的豐度和多樣性[4].此外，喂食了抗生素的動物，其腸道內抗性基因的豐度和多樣性均有所提高[5].動物腸道內的耐藥菌和抗性基因隨著動物的排泄進入環(huán)境中，直接增加了環(huán)境中抗性基因的豐度及多樣性。
抗生素抗性基因是一種新型的環(huán)境污染物[3，6].攜帶抗生素抗性基因的微生物( 如致病菌等) 能對相應的抗生素產生耐藥性，這使得抗生素在治療由致病菌引起的疾病時療效下降甚至無效，嚴重威脅人類健康[4，7].2011 年德國爆發(fā)“毒黃瓜”事件，在歐洲至少9 個國家蔓延，造成33 人死亡，超過3000 人受到感染，其中至少470 人出現腎功能衰竭并發(fā)癥，引起本次疫情的就是一種新型的高傳染性攜帶多種抗性基因的致病菌[4].在美國每年有超過200 萬人感染耐藥病原體，其中有14000 人死亡[6]。
固化微生物污水凈化器( biocleaner) 是Bio Cleaner 公司研發(fā)的由微生物發(fā)生器與高效曝氣裝置組合的污水治理專用設備.對該裝置處理養(yǎng)殖廢水的研究結果表明： ( 1) 微生物固化曝氣技術能有效去除常規(guī)污染物，除TP 外，COD 和NH+4 -N 的出水濃度均能達到《畜禽養(yǎng)殖業(yè)污染物排放標準》( GB 18596—2001) ; ( 2) 該技術對抗生素的去除效果依抗生素的種類而變，對4 種四環(huán)素類抗生素的去除率高達85%以上; 對大環(huán)內酯類中的阿奇霉素的去除率為62.8%; 對大環(huán)內酯類中的羅紅霉素和氟喹諾酮類抗生素則基本無效[8]。
本研究在之前研究[8]的基礎上，采用高通量熒光定量PCR 技術，進一步研究： ( 1) 養(yǎng)殖廢水中各種抗生素抗性基因在進水、各處理池、出水中的分布與變化; ( 2) 固化曝氣技術對各種抗生素抗性基因的去除效果; ( 3) 各種抗性基因的去除效果與常規(guī)污染物和抗生素的去除是否有耦合關系。
1 材料與方法( Materials and Methods)
1.1 系統(tǒng)運行
處理系統(tǒng)采用美國Biocleaner 技術，由沉淀池、一級處理池、二級處理池和氧化塘組成.各處理單元的尺寸( 長×寬×高) 分別為： 沉淀池25 m×20 m×5 m、一級處理池25 m×20 m×2 m、二級處理池25 m×20 m×2 m 和氧化塘40 m×30 m×4 m[8].各處理單元用管道連接，按照高程由高到低，依次排列沉淀池、一級處理池、二級處理池和氧化塘，省去不同處理單元間依靠泵為動力進行的水力流動.該處理系統(tǒng)廢水來自于附近多個養(yǎng)殖場直排的清糞水，每日污水處理量為150—200 t.在一級處理和二級處理池中分別放置一個曝氣機和一個Biocleaner 設備，曝氣機功率為2.2 kV，采用人工開啟電閘控制，運行時間為24 h·d-1 .Biocleaner 設備裝載微生物載體，無需人工維護.系統(tǒng)自2013 年8 月試運行，經過12 個月調試，于2014 年8 月穩(wěn)定運行.本研究以穩(wěn)定運行監(jiān)測數據進行分析。
1.2 樣點布設與采樣點概況
研究樣地位于龍巖市某養(yǎng)殖廢水處理示范點.依據處理系統(tǒng)的運行情況，于2014 年8 月，進行1 次系統(tǒng)地采樣，采集12 個點，其中進水1 個( Ⅰ) ，沉淀池2 個( Ⅱ) ，一級處理池( Ⅲ) 、二級處理池( Ⅳ) 和氧化塘( Ⅴ) 各3 個( 圖1) .分析測試了12 個點的NH+4 -N、NO-3 -N、TN、TP、COD、TOC、9 種抗生素( 4 種四環(huán)素： 土霉素、四環(huán)素、金霉素、強力霉素; 2 種大環(huán)內酯類抗生素： 羅紅霉素、阿奇霉素; 3 種氟喹諾酮類抗生素： 氧氟沙星、恩諾沙星、環(huán)丙沙星) ，研究結果已經發(fā)表[8].本研究選取進水以及各處理單元出水樣品( Ⅰ-1、Ⅱ-2，Ⅲ-2、Ⅳ-3、Ⅴ-3) 進行抗生素抗性基因分析。
1.3 DNA 提取
根據水樣的渾濁程度，量取一定體積的水樣倒入50 mL 離心管中，12000 r·min-1轉速離心10 min，倒掉上清液，在每個離心管中加入1 mL 生理鹽水，將底部的沉淀充分混勻.再將樣品全部轉移至新的1.5 mL離心管中，18000 r·min-1離心5 min 后，倒掉上清液.若所得固體沉淀樣品過少，則重復上述操作，直到所得樣品約為0. 5 g.然后加入978 μL PBS 緩沖液( FastDNA SPIN kit for Soil 試劑盒，MPBiomedical，美國) ，并全部轉移到試劑盒中的Lysing Matrix E 管，按試劑盒提供的操作說明進行提取.具體步驟如下： 加入122 μL MT Buffer，在FastPrep 儀器中進行振蕩破碎均質化( 時間30 s，速度6.0 m·s-1 ) ，然后對Lysing Matrix E 管進行離心處理( 14000 r·min-1，15 min) .將上清液轉移到一個新的2 mL離心管中，加入250 μL PPS，并用手搖10 次進行混合.對樣品再一次進行離心( 14000 r·min-1，5 min) ，將上清液轉移到一個新的2 mL 離心管中，并加入1 mL Binding Matrix Suspension，用手上下顛倒2 min，使DNA 附著到基質上，靜置約3 min.去除約500 μL 上清，分多次將Binding Matrix 全部轉移到SPINTM Filter 中，加入500 μL SEWS-M 到SPINTM Filter 中對Binding Matrix 進行清洗，通過離心去除SEWS-M，在室溫下風干SPINTM Filter 5 min.最后加入70 μL DES 溶液進行DNA 洗脫。
1.4 高通量熒光定量PCR
本實驗采用SmartChip Real-time PCR Systems( WaferGen 公司，美國) 的高通量熒光定量的反應平臺[9-11].總共使用了296 對引物，由于一個基因有多個引物，因此共有214 對抗性基因的引物( 基本上覆蓋目前所有的抗性基因種類) ，5 對可移動原件基因引物和1 對16S rRNA 基因引物.
反應體系和反應程序與Ouyang 等[11]和黃福義等[12]的一致.采用100 nL 反應體系，各試劑濃度為：LightCycler 480 SYBR Green Ⅰ Master Mix 1×，DNA 濃度5 ng·μL-1，BSA 濃度1 ng·μL-1和1 μmol·L-1引物.反應程序為： 95 ℃預變性10 min，95 ℃變性30 s，60 ℃退火延伸30 s，40 個循環(huán); 程序自動升溫進行溶解曲線分析.
定量PCR 數據處理參照文獻進行[11，13]，以CT值31 作為儀器的檢測閾值.每個樣品進行3 次技術重復，只有當每個樣品中3 個重復同時檢測出時，才認為目的基因被有效檢出.抗性基因相對拷貝數的計算參照公式( 1) 和( 2) [5，11，13]，然后通過16S rRNA 絕對拷貝數與抗性基因相對拷貝數計算出抗性基因的絕對拷貝數( 公式3) .
基因拷貝數= 10( ( 31-CT) /( 10/3) ) ( 1)
抗性基因相對拷貝數( 相對豐度) = 抗性基因拷貝數/16S rRNA 基因拷貝數( 2)
抗性基因絕對豐度=抗性基因相對拷貝數×16S rRNA 基因的絕對拷貝數( 3)
1.5 16S rRNA 定量
采用Roche 480 定量PCR 儀測定樣品中的16S rRNA 基因，并采用標準質粒外標法對其豐度進行絕對定量[11].標準質粒原始濃度為1.39×109 copies·μL-1，標準曲線( 10 倍稀釋) 的范圍為1.39×103—1.39×109 copies·μL-1 .使用20 μL 反應體系： 10 μL 2×LightCycler 480 SYBR Green Ⅰ Master Mix，上下游引物各1 μL，1 μL DNA 模板和7 μL 無菌水.反應運行程序為： 95 ℃預變性5 min，40 個循環(huán)( 95 ℃變性15 s，60 ℃退火1 min，72 ℃延伸15 s) ，儀器自動添加溶解曲線程序.用滅菌超純水代替樣品進行陰性對照，每個樣品均做3 次重復.
1.6 數據處理與分析
平均值以及標準差使用Excel 2007 版本進行計算; 顯著性分析和Pearson 相關分析使用SPSS 17.0版本進行分析; 在計算檢測到的基因數量時，由于一個基因有多個引物，如果有多對引物檢測出同一個基因，在計算時只算檢出一個.
2 結果與討論( Results and Discussion)
2.1 抗性基因多樣性
在整個處理系統(tǒng)中，所有水樣中共檢出123 種抗性基因和5 種可移動遺傳元件.進水中檢測出111 種抗性基因和可移動遺傳元件( MGES) ，沉淀池、一級處理池中均檢測出115 種，二級處理池和出水中分別檢測出108 種和95 種，比進水( 111 種) 略有降低( 圖2) .此外，二級處理池和出水的Shannon 和Inverse Simpson 指數也均低于進水( 表1) .這說明微生物固化曝氣技術能降低養(yǎng)殖廢水中抗性基因的多樣性.該出水是直接排入九龍江流域的.在九龍江流域城市河段的2 個水樣中，檢測出的抗性基因數量分別為131 和161 種[11].本研究中畜禽養(yǎng)殖廢水出水中所檢測到的抗性基因種類較少，為90 個.這說明九龍江流域中抗性基因的來源不僅有畜禽養(yǎng)殖廢水這一種途徑，應該還有來自于城市污水處理廠這一途徑。
根據抗性基因對抗生素的抗性機制，可將檢測到的抗性基因分為抗生素失活( antibiotic deactivate) 、抗生素外排( efflux pump) 、細胞核糖體保護( cellular protection) 和其他( unknown) 4 種類型.抗生素失活機制的抗性基因，在各種樣品中占46.67% — 50.91%( 表2) .黃福義等[12]研究長期施用豬糞的水稻土以及Ouyang 等[11]研究九龍江流域的水體時，也發(fā)現抗生素失活機制的抗性基因所占比例最大，分別為：42.59%和49.06%.這說明攜帶抗生素失活機制基因的微生物是各種環(huán)境介質中常見的種類.抗生素外排機制的抗性基因，其檢出種類僅次于抗生素失活機制的抗性基因，從進水的30.19%到出水的32.22%.攜帶抗生素外排抗性基因的細菌，不僅可以將抗生素排出細胞外，還能將重金屬和其它有毒分子等排出體外[14].這使得攜帶抗生素外排泵抗性基因的微生物能更好地適應環(huán)境.
從抗性基因所對應的抗生素類型來看，所檢測出的抗性基因覆蓋了所劃分的9 種類型： 氨基糖苷類抗性基因( aminoglycoside) 、β-內酰胺類抗性基因( beta-lactamase) 、氯霉素類抗性基因( chloramphenicol) 、大環(huán)內酯類林肯酰胺類鏈陽性菌素B 抗性基因( MLSB) 、多重耐藥基因( multidrug) 、磺胺類抗性基因( sulfonae) 、四環(huán)素類抗性基因( tetracycline) 、萬古霉素抗性基因( vancomycin) 以及其它類型抗性基因( others) .隨著污水處理的不斷深入，9 種類型的抗性基因數量在各個處理池間無明顯差異，在各處理池間所占比例分別為： 17.78%—19.42%、14.15%—17.78%、1.82%—2.22%、12.22%—17.92%、19.81%—21.11%、1.82%—2.22%、12.26%—14.44%、3.64%—5.66%和7.27%—8.18%( 表2) .相對而言，多重耐藥基因檢出種類在各處理單元中所占比例最大.多重耐藥基因會使攜帶其的微生物對多種抗生素具有耐藥性，進而有可能使微生物成為“超級細菌”.本研究說明該畜禽養(yǎng)殖廢水對人類健康有“超級細菌”的潛在威脅。
2.2 抗性基因豐度
經微生物固化曝氣技術處理后，養(yǎng)殖廢水中抗性基因絕對豐度顯著減少( 圖3) .進水中抗性基因的絕對豐度為3.8×1010 copies·mL-1，而出水中為2.4×109 copies·mL-1，去除率達93.6%.沉淀池、一級處理池、二級處理池和氧化塘對抗性基因的去除貢獻不一樣： 沉淀池中抗性基因絕對豐度為3. 1 ×1010 copies·mL-1，去除率為18.0%; 一級處理池中抗性基因絕對豐度為6.6×109 copies·mL-1，去除率為64.7%; 二級處理池中抗性基因絕對豐度為3.2×109 copies·mL-1，去除率為9.0%; 氧化塘中抗性基因絕對豐度為2.4×109 copies·mL-1，去除率為1.9%.一級處理池對抗性基因去除貢獻最大，為64.7%.
抗性基因的相對豐度在各處理池間并沒有顯著區(qū)別( 圖4) ，進水為2.37，出水為3.14.這意味著抗性基因絕對豐度的減少是由于廢水中16S rRNA 絕對豐度( 或者說微生物數量) 減少所引起的，而不是該處理系統(tǒng)能選擇性去除抗生素抗性基因.此外，相對于進水，出水中抗性基因絕對豐度雖然減少了很多，但仍比自然水體高出不少.Ouyang 等[11]研究發(fā)現九龍江流經城市的河段水體中抗性基因的絕對豐度為9.7×107—1.0×108 copies·mL-1，發(fā)源地河段水體中抗性基因的絕對豐度為7.2×105 copies·mL-1 .這表明經微生物固化曝氣技術處理后，養(yǎng)殖廢水中抗生素抗性基因仍有可能對排放的水體產生污染.
隨著養(yǎng)殖廢水的不斷處理，不同抗性機制抗性基因的絕對豐度比例也在發(fā)生變化( 表3) .攜帶抗生素失活的抗性基因在各處理池之間無顯著變化，進水中為43.2%，出水中為40.4%; 攜帶細胞核糖體保護的抗性基因在逐步降低，在進水、沉淀池、一級處理池、二級處理池和出水中依次為23.5%、15.6%、6.2%、2.4%和5.3%; 攜帶外排泵機制的抗性基因在逐步增加，在進水、沉淀池、一級處理池、二級處理池和出水中依次為33.3%、35.6%、48.5%、58.4%和54.2%.這進一步說明，攜帶外排泵機制的抗性基因的微生物相對于攜帶其它抗性機制的基因的微生物來說，具有更好的環(huán)境適應性.
從抗性基因所對應的抗生素類型來看( 表3) ： ( 1) 氨基糖苷類抗性基因和四環(huán)素類抗性基因在各處理單元中均穩(wěn)定地占有較高的比例( 分別為30.4%—40.3%和25.1%—29.9%) ; ( 2) 多重耐藥基因雖然檢出種類最多，但是它們的絕對豐度在進水中并不是最多的.然而，隨著養(yǎng)殖廢水的不斷處理，其所占比例逐步增加，在進水、沉淀池和一級處理池中依次為： 19.2%、22.5%和26.5%，并在二級處理池( 34.0%)和出水( 32.8%) 中超過氨基糖苷類成為污水中豐度最高的抗性基因; ( 3) 雖然大環(huán)內酯類林肯酰胺類鏈陽性菌素B 抗性基因及β-內酰胺類抗性基因在各處理池中檢出的數量不少( 表1) ，但是絕對豐度所占的比例卻很少( 表3) ; ( 4) 在整個處理系統(tǒng)中，萬古霉素抗性基因絕對豐度所占的比例最小，在0.01%—0.02%之間，這應該是由于萬古霉素抗生素僅用于人類疾病治療[11]，而生豬養(yǎng)殖行業(yè)不使用萬古霉素.
2.3 抗性基因與常規(guī)污染物、抗生素相關性分析
Forsberg 等[15]研究發(fā)現微生物群落組成是土壤抗性基因含量的主要決定因素; Su 等[9]同樣發(fā)現抗性基因與微生物群落結構顯著相關.氮、磷等常規(guī)污染物，作為微生物生長繁殖的必要營養(yǎng)物質，可以通過影響微生物的生長，進而影響抗性基因的豐度.將常規(guī)污染物濃度[8]與不同抗性機制抗性基因和不同抗生素種類抗性基因的絕對豐度進行相關性分析( 表4) 發(fā)現，TN 與外排泵機制抗性基因、磺胺類抗性基因、四環(huán)素類抗性基因和總抗性基因的絕對豐度呈顯著正相關( P<0.05) ，這說明攜帶這幾類抗性基因的微生物的生長和繁殖受環(huán)境中總氮水平的制約.
抗生素濫用被認為是導致環(huán)境中抗生素抗性基因急劇增加的主要因素.Looft 等[5]研究發(fā)現，抗生素的使用能提高豬腸道內抗生素抗性基因的豐度及多樣性; 梁惜梅等[16]也發(fā)現，珠江口水產養(yǎng)殖區(qū)沉積物中抗生素總濃度與ARGs 總含量顯著相關; Wu 等[17]研究發(fā)現四環(huán)素類抗生素殘余與四環(huán)素類抗性基因絕對豐度之間存在顯著相關.研究發(fā)現土霉素濃度與多種抗性基因( 氯霉素類抗性基因、大環(huán)內酯類林肯酰胺類鏈陽性菌素B 抗性基因、四環(huán)素類抗性基因、細胞核糖體保護機制抗性基因、抗生素外排泵機制抗性基因和總抗性基因) 的絕對豐度均存在顯著正相關( 表4) ; 四環(huán)素濃度除與β-內酰胺類抗性基因的絕對豐度存在相關性外，與其它抗性基因間并無顯著相關.這表明抗生素對抗性基因的影響因抗生素種類而異.養(yǎng)殖廢水中土霉素殘留可能是影響?zhàn)B殖廢水中抗性基因絕對豐度的重要原因，因此可以通過控制土霉素在養(yǎng)殖場中的使用，有效降低養(yǎng)殖廢水中抗性基因的絕對豐度.具體聯(lián)系污水寶或參見http://www.yiban123.com更多相關技術文檔。
3 結論( Conclusion)
( 1) 微生物固化曝氣技術能有效降低養(yǎng)殖廢水中抗性基因的種類和多樣性.
( 2) 該技術也能有效去除養(yǎng)殖廢水中的抗生素抗性基因，去除率高達93.6%.沉淀池、一級處理池、二級處理池和氧化塘對抗性基因的去除貢獻分別為18.0%、64.7%、9.0%和1.9%.其中，一級處理池對抗性基因去除貢獻最大.
( 3) 養(yǎng)殖廢水出水中抗性基因絕對豐度仍高于自然水體，其直接排放仍有抗性基因污染風險.
( 4) 畜禽養(yǎng)殖廢水中TN 和土霉素的含量與許多抗生素抗性基因總豐度存在正相關性.通過對這兩種物質的去除或者控制使用，可能是降低養(yǎng)殖廢水中抗性基因豐度的一種有效途徑.(來源：環(huán)境化學)
